| 浒苔(Ulva prolifera)共附生细菌群落结构分析的引物优化 |
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| 引用本文： | 刘晓杰,赵瑾,郭扬,吴春辉,陈华新,姜鹏.浒苔(Ulva prolifera)共附生细菌群落结构分析的引物优化[J].海洋科学,2019,43(12):35-41. |
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| 作者姓名： | 刘晓杰 赵瑾 郭扬 吴春辉 陈华新 姜鹏 |
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| 作者单位： | 中国科学院海洋研究所 实验海洋生物学重点实验室, 山东 青岛 266071;青岛海洋科学与技术试点国家实验室 海洋生物学与生物技术功能实验室, 山东 青岛 266237;中国科学院 海洋大科学研究中心, 山东 青岛 266071;中国科学院大学, 北京 100049,中国科学院海洋研究所 实验海洋生物学重点实验室, 山东 青岛 266071;青岛海洋科学与技术试点国家实验室 海洋生物学与生物技术功能实验室, 山东 青岛 266237;中国科学院 海洋大科学研究中心, 山东 青岛 266071,中国科学院海洋研究所 实验海洋生物学重点实验室, 山东 青岛 266071;青岛海洋科学与技术试点国家实验室 海洋生物学与生物技术功能实验室, 山东 青岛 266237;中国科学院 海洋大科学研究中心, 山东 青岛 266071;中国科学院大学, 北京 100049,中国科学院海洋研究所 实验海洋生物学重点实验室, 山东 青岛 266071;青岛海洋科学与技术试点国家实验室 海洋生物学与生物技术功能实验室, 山东 青岛 266237;中国科学院 海洋大科学研究中心, 山东 青岛 266071;中国科学院大学, 北京 100049,中国科学院海洋研究所 实验海洋生物学重点实验室, 山东 青岛 266071;青岛海洋科学与技术试点国家实验室 海洋生物学与生物技术功能实验室, 山东 青岛 266237;中国科学院 海洋大科学研究中心, 山东 青岛 266071,中国科学院海洋研究所 实验海洋生物学重点实验室, 山东 青岛 266071;青岛海洋科学与技术试点国家实验室 海洋生物学与生物技术功能实验室, 山东 青岛 266237;中国科学院 海洋大科学研究中心, 山东 青岛 266071 |
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| 基金项目： | 国家自然科学基金（41776153）；青岛海洋科学与技术试点国家实验室开放基金（QNLM2016ORP0303） |
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| 摘 要： | 海藻共附生细菌密切参与宿主的生长发育、营养吸收等重要过程,浒苔(Ulva prolifera)是构成黄海绿潮的唯一优势种,对其共附生细菌开展群落结构分析,有望为成灾机制研究提供重要线索。由于植物叶绿体基因组同时具备原核特征和高拷贝数,会严重干扰共附生细菌基于16S rDNA的序列扩增。高等植物中开发了通用引物799F,利用其3′末端与植物同源区的非配对双碱基,可实现对细菌来源序列的特异性扩增。本文针对多个浒苔群体样本,首次评价了引物799F在藻类中的适用性,发现799F的3′末端与浒苔叶绿体同源区仅存在非配对单碱基,其扩增仍会受到浒苔叶绿体严重干扰。在引物799F的基础上,设计了新引物800F,与通用反向引物1492R配对扩增细菌16S rDNA中具高分辨率的V5-V9可变区,配合使用具热启动功能、同时不具校对功能的DNA聚合酶,可基本完全避免浒苔叶绿体来源序列的扩增,并阐明了方法的原理。优化的引物扩增方案可用于浒苔共附生细菌群落结构分析。
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| 关 键 词： | 16SrDNA 共附生细菌 浒苔(Ulva prolifera) 叶绿体 引物 |
| 收稿时间： | 2019/7/11 0:00:00 |
| 修稿时间： | 2019/7/21 0:00:00 |
Primers modification for analysis of Ulva prolifera-associated bacterial community |
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| LIU Xiao-Jie,ZHAO Jin,GUO Yang,WU Chun-Hui,CHEN Hua-Xin and JIANG Peng.Primers modification for analysis of Ulva prolifera-associated bacterial community[J].Marine Sciences,2019,43(12):35-41. |
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| Authors: | LIU Xiao-Jie ZHAO Jin GUO Yang WU Chun-Hui CHEN Hua-Xin and JIANG Peng |
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| Institution: | CAS Key Laboratory of Experimental Marine Biology, Institute of Oceanology, Chinese Academy of Sciences, Qingdao 266071, China;Laboratory for Marine Biology and Biotechnology, Qingdao National Laboratory for Marine Science and Technology, Qingdao 266237, China;Center for Ocean Mega-Science, Chinese Academy of Sciences, Qingdao 266071, China;University of Chinese Academy of Sciences, Beijing 100049, China,CAS Key Laboratory of Experimental Marine Biology, Institute of Oceanology, Chinese Academy of Sciences, Qingdao 266071, China;Laboratory for Marine Biology and Biotechnology, Qingdao National Laboratory for Marine Science and Technology, Qingdao 266237, China;Center for Ocean Mega-Science, Chinese Academy of Sciences, Qingdao 266071, China,CAS Key Laboratory of Experimental Marine Biology, Institute of Oceanology, Chinese Academy of Sciences, Qingdao 266071, China;Laboratory for Marine Biology and Biotechnology, Qingdao National Laboratory for Marine Science and Technology, Qingdao 266237, China;Center for Ocean Mega-Science, Chinese Academy of Sciences, Qingdao 266071, China;University of Chinese Academy of Sciences, Beijing 100049, China,CAS Key Laboratory of Experimental Marine Biology, Institute of Oceanology, Chinese Academy of Sciences, Qingdao 266071, China;Laboratory for Marine Biology and Biotechnology, Qingdao National Laboratory for Marine Science and Technology, Qingdao 266237, China;Center for Ocean Mega-Science, Chinese Academy of Sciences, Qingdao 266071, China;University of Chinese Academy of Sciences, Beijing 100049, China,CAS Key Laboratory of Experimental Marine Biology, Institute of Oceanology, Chinese Academy of Sciences, Qingdao 266071, China;Laboratory for Marine Biology and Biotechnology, Qingdao National Laboratory for Marine Science and Technology, Qingdao 266237, China;Center for Ocean Mega-Science, Chinese Academy of Sciences, Qingdao 266071, China and CAS Key Laboratory of Experimental Marine Biology, Institute of Oceanology, Chinese Academy of Sciences, Qingdao 266071, China;Laboratory for Marine Biology and Biotechnology, Qingdao National Laboratory for Marine Science and Technology, Qingdao 266237, China;Center for Ocean Mega-Science, Chinese Academy of Sciences, Qingdao 266071, China |
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| Abstract: | Macroalgal-associated bacteria play key roles in terms of algal growth and nutrition acquisition. Ulva prolifera is the only dominated species of green tides in the Yellow Sea. The study of the community structure of associated bacteria would contribute to reveal bacteria''s key function in the blooming of their host. Due to a prokaryotic origin and high copy numbers, the genomic DNA of plant chloroplast usually interferes with the amplification of 16S rDNA fragments from associated bacteria. To overcome this issue in higher plants, a universal primer 799F, which has a two-bp mismatched 3''end with chloroplast DNA was developed to specifically amplify fragments only from bacteria. In this study, for the first time, the primer 799F was evaluated in seaweed considering different strains of U. prolifera. However, the failure of bacteria-bias amplification was revealed and attributed to only one-bp mismatched 3'' end of primer 799F with determined U. prolifera chloroplast DNA. According to the comparison and modification, a new primer 800F was designed based on 799F. Coupled with the universal reverse primer 1492R, the V5-V9 region from the 16S rDNA of bacteria could be amplified without almost any interference from Ulva chloroplast when hot-start and non-proofreading DNA polymerase were used. This study clarifies the principle of modified profile with new primer, which can be applied to the analysis of community structure of U. prolifera-associated bacteria. |
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| Keywords: | 16S rDNA associated bacteria Ulva prolifera chloroplast primer |
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