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温度、pH对缢蛏(Sinonovacula constricta)消化酶活力的影响 总被引：8，自引：0，他引：8
本文研究了温度、pH对缢蛏(Sinonovacula constricta(Lamarck))三种主要消化酶(蛋白酶、淀粉酶和纤维素酶)活力的影响。结果表明：当温度在5～75℃之间时，蛋白酶、纤维素酶和淀粉酶的最适温度分别为为55℃、45℃和65℃；在不同的pH范围内，蛋白酶的最适PH值为9．2，淀粉酶的最适PH值为6．3和7．7，纤维素酶的最适PH值为5．2。缢蛏的淀粉酶和蛋白酶活力较大，纤维素酶活力极微。 相似文献
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产复合酶菌株Pseudomonas sp.NJ197产酶发酵条件的研究 总被引：2，自引：0，他引：2
从南极普利兹湾深海900m的沉积物中筛选到一株同时产多种低温复合酶的菌 株NJ197,作者对其进行碳源、氮源、无机盐、起始pH值、培养时间、接种量等发酵条 件的优化实验．实验结果证明,在以0．5％可溶性淀粉为碳源,以0．5％豆饼粉为氮 源,无机盐:0．424％NH4H2PO4、0．075％K2HPO4、0．02％MgSO4、0．5％CaCO3,起始 pH值8．5,接种36h种龄的种子10％,20℃、250r／min的条件下在旋转摇床中培养 72h,产复合酶菌株产脂肪酶和淀粉酶活性最高．最佳的生理条件下复合酶中的碱性 脂肪酶和淀粉酶的产量分别提高到22．4U／cm3和30．9U／cm3,该产复合酶菌株可以 作为诱变育种、基因工程菌改造的出发菌株,在洗涤和制革工业中有良好的应用前 景． 相似文献
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华贵栉孔扇贝两种壳色群体生长和消化酶活力比较 总被引：2，自引：0，他引：2
以华贵栉孔扇贝桔黄和紫褐壳色个体为亲本建立两个壳色群体,从壳长、壳高、壳宽和体重几方面进行生长比较,并对两个群体做了淀粉酶和纤维素酶活力比较。结果表明:桔黄壳色群体的平均壳长、平均壳高、平均壳宽和平均体重显著大于紫褐壳色群体(P<0.05)。在24℃、27℃、30℃和33℃条件下,桔黄壳色群体的淀粉酶和纤维素酶活力显著高于紫褐壳色群体(P<0.05);不同壳色群体生长与其淀粉酶和纤维素酶活力有关。 相似文献
4.
产淀粉酶的海洋曲霉菌的分离及酶学特性初步研究 总被引：2，自引：0，他引：2
从乐清湾红树林中分离获得2株产淀粉酶的真菌,经初步鉴定为曲霉属菌株,暂命名为曲霉5#和曲霉34#。对它们的生长温度、固体发酵时的产酶条件以及淀粉酶特性进行了初步研究。该研究结果表明,曲霉5#和曲霉34#的最适生长温度分别为30~35℃和25~30℃,最高生长温度分别为40℃和35℃,在10℃下均能生长。对两株菌进行固体发酵时其最佳培养时间为96 h。两株菌所产淀粉酶的最适pH值为7.0,最适反应温度为40℃;淀粉酶在50℃下仍能保持活力,60℃下酶活力开始下降,80℃时酶几乎失活;离子对淀粉酶的激活或抑制作用也相似。 相似文献
5.
华贵栉孔扇贝基础群体内大小分化个体的淀粉酶和纤维素酶活力比较 总被引：1，自引：0，他引：1
在2006年3月,从湛江乌石养殖的华贵栉孔扇贝群体随机挑选100只个体作为亲本建立了基础群体。在2006年10月,从基础群体分别选择大、小个体构成两个子群体,比较了这两个子群体在不同温度时的淀粉酶和纤维素酶活力的差异。在20℃时,两个子群体的淀粉酶活力差异不显著(P>0.05);在25℃和30℃时,大个体子群体的淀粉酶活力显著大于小个体子群体的淀粉酶活力(P<0.05)。在20、25和30℃时,大个体子群体的纤维素酶活力显著大于小个体子群体的纤维素酶活力(P<0.05)。这些说明华贵栉孔扇贝的淀粉酶和纤维素酶活力与生长性状相一致。 相似文献
6.
Totally more than 500 yeast strains were isolated from seawater, sea sediments, mud of sea salterns, marine fish guts and marine algae. The results of routine and molecular biology identification methods show that nine strains among these marine yeasts belong to Aureobasidium pullulans, although the morphologies of their colonies are very different. The marine yeasts isolated from different marine environments indicate that A. pullulans is widely distributed in different environmental conditions. These Aureobasidium pullulans strains include A. pullulans 4#2, A. pullulans N13d, A. pullulans HN3-11, A. pullulans HN2-3, A. pullulans JHSc,A. pullulans HN4.7, A. pullulans HN5.3, A. pullulans HN6.2 and A. pullulans W13a. A. pullulans 4#2 could produce cellulase and single cell protein. A. pullulans N13d could produce protease, lipase, amylase and cellulase. Both A. pullulans HN3-11 and A. pullulans HN2-3 were able to produce protease, lipase and cellulase. A. pullulans JHSc could secrete cellulase and killer toxin. Both A.pullulans HN4.7 and A. pullulans HN5.3 could yield lipase and cellulase. A. pullulans W13a was able to secrete extracellular amylase and cellulase while A. pullulans HN4.7 and A. pullulans N13d could produce siderophores. This means that different A. pullulans strains from different marine environments have different physiological characteristics, which may be applied in many different biotechnological industries. 相似文献
7.
热球菌目古菌是深海热液区极端高温环境下的主要古菌类群,其具有丰富的胞外水解酶系以获得营养物质。本研究对来源于深海热液区的太平洋古球菌Palaecoccus pacificus DY20341~T的高温淀粉酶系进行了分析。基于酶活测定、SDS-PAGE复性胶检测和保守位点、结构域、信号肽等序列分析,解析其种类及特点。结果显示,菌株DY20341~T的高温淀粉酶系包括胞外淀粉酶(PAP00275)、胞外环糊精葡糖基转移酶(PAP01075)、胞内淀粉酶(PAP09095)和胞内4-α-葡聚糖转移酶(PAP09225)。4种酶在60～110℃温度范围具有酶活性,且100℃时酶活性最高。研究表明,DY20341~T含有多个耐高温淀粉酶及转运系统,有助于其在深海热液区适应高温和摄取营养,是一种重要的环境适应机制。 相似文献
8.
饲料粗蛋白含量对刺参消化酶及消化道结构的影响 总被引：1，自引：0，他引：1
本实验以鱼粉、酪蛋白以及藻粉等为主要原料配制了粗蛋白质量分数为12%、16%、20%、24%、28%、32%的6种半精制刺参(Apostichopus japonicus)饲料,研究饲料中粗蛋白含量对刺参生长、蛋白酶和淀粉酶活性以及肠道结构的影响。结果表明,刺参饲料中粗蛋白含量对刺参的生长、饲料系数、蛋白质效率以及消化道中蛋白酶和淀粉酶活性都有明显影响,肠道蛋白酶和淀粉酶活性对饲料粗蛋白含量有适应性,随饲养时间也有适应性变化。饲料中粗蛋白含量对刺参肠道结构也有一定的影响。 相似文献
9.
本文研究了0.2、2、20μg/g金雀异黄素腹腔注射金鱼(Carassius auratus) 7d后,金鱼肝胰脏和肠蛋白酶、淀粉酶和碱性磷酸酶活性的变化.结果表明:随金雀异黄素浓度的升高,金鱼肝胰脏和肠蛋白酶、淀粉酶及肠碱性磷酸酶活性都有所降低.0.2μg/g金雀异黄素处理组,金鱼蛋白酶和淀粉酶活力降低并不显著,而肠碱性磷酸酶活力显著下降(P＜0.05);2μg/g金雀异黄素处理组,金鱼蛋白酶和淀粉酶活力显著下降,碱性磷酸酶活力表现极显著下降(P＜0.01),仅为对照组的44％;20μg/g金雀异黄素处理组,金鱼蛋白酶和淀粉酶活力极显著下降,其中肠蛋白酶活性降了90％以上.本文证实了较高浓度的金雀异黄素能显著降低金鱼主要消化酶的活性,进而影响金鱼正常生长,但较低浓度的金雀异黄素对金鱼消化酶无显著影响.研究结果为大豆蛋白在水产养殖中的适量应用提供了参考数据. 相似文献
10.
Totally more than 500 yeast strains were isolated from seawater, sea sediments, mud of sea salterns, marine fish guts and
marine algae. The results of routine and molecular biology identification methods show that nine strains among these marine
yeasts belong to Aureobasidium pullulans, although the morphologies of their colonies are very different. The marine yeasts isolated from different marine environments
indicate that A. pullulans is widely distributed in different environmental conditions. These Aureobasidium pullulans strains include A. pullulans 4#2, A. pullulans N13d, A. pullulans HN3-11, A. pullulans HN2-3, A. pullulans JHSc, A. pullulans HN4.7, A. pullulans HN5.3, A. pullulans HN6.2 and A. pullulans W13a. A. pullulans 4#2 could produce cellulase and single cell protein. A. pullulans N13d could produce protease, lipase, amylase and cellulase. Both A. pullulans HN3-11 and A. pullulans HN2-3 were able to produce protease, lipase and cellulase. A. pullulans JHSc could secrete cellulase and killer toxin. Both A. pullulans HN4.7 and A. pullulans HN5.3 could yield lipase and cellulase. A. pullulans W13a was able to secrete extracellular amylase and cellulase while A. pullulans HN4.7 and A. pullulans N13d could produce siderophores. This means that different A. pullulans strains from different marine environments have different physiological characteristics, which may be applied in many different
biotechnological industries. 相似文献